MG-63及U20S细胞分别培养于含10%胎牛血清的DMEM高糖培养基及McCoy’s 5a Medium Modified培养基中,将MG-63及U20S细胞放于37℃,5%CO2的培养箱中培养。当细胞生长至90%融合时进行传代,根据实验需要给予相应的干预; 2.上述传代培养的细胞,应用CCK-8法检测BBR对MG-63、U2OS细胞增殖的影响;
Alectinib制造商 3.上述传代培养的细胞,应用流式细胞仪检测BBR对MG-63、U2OS细胞凋亡的影响; 4.上述传代培养的细胞,将p38MAPK及JNK的抑制剂SB203580及SP600125与MG-63、U2OS细胞及BBR共同孵育24 h后,应用流式细胞仪检测BBR对MG-63、U2OS细胞凋亡的影响; 5.上述传代培养的细胞,随机分为Control组,DMSO组,10ug/mlBBR组,50 ug/mlBBR组,100 ug/mlBBR组,每组设5复孔。分别将溶媒DMSO, 10ug/ml BBR,50 ug/mlBBR,100 ug/mlBBR加入相应的孔中,孵育24 h后按照caspase-3活性试剂盒说明书方法检测MG-63、U2OS细胞的caspase-3活性; 6.BBR干预MG-63、U20S细胞24 h后,收集细胞并提取细胞蛋白质,应用Western-blotting方法检测MG-63、U2OS细胞中Bcl-2、Bax (?)勺表达。 实验结果: 1.BBR呈时间与剂量依赖性抑制MG-63、U2OS细胞增殖。 2.BBR诱导MG-63、U2OS细胞发生凋亡,p38MAPK抑制剂SB203580与JNK抑制剂SP600125显著抑制BBR诱导的MG-63、U2OS细胞凋亡。结果显示,对照组,溶媒组,10 ug/mlBBR组,50 ug/mlBBR组,100 ug/mlBBR组MG-63细胞凋亡的比例分别为(3.570±0.661)%,(5.820±0.456)%,(7.930±0.511)%,(13.630±1.352)%和(22.187±1.962)%;对照组,溶媒组,10ug/mlBBR组,50 ug/mlBBR组,100ug/mlBBR组U20S细胞凋亡的比例分别为(4.083±1.301)%,(7.803±0.626)%,(10.630±0.534)%,(17.470±1.984)%和(27.660±2.088)%。三种BBR组细胞凋亡的比例与溶媒组的差异具有统计学意义(P
第一章氟非尼酮对肾小管上皮细胞炎症反应的影响及作用机制研究 研究背景:肾纤维化是各种慢性肾脏疾病进展至终末期肾病的共同通路和主要病理基础。无论何种病因导致的慢性肾脏疾病,随着慢性肾脏疾病的进展往往会导致广泛的组织纤维化、肾实质完全破坏和肾功能衰竭。因此,攻克肾脏纤维化一直是慢性肾衰竭防治中最为关键的科学问题。抗肾纤维化新药AKF-PD是本课题组设计的小分子化合物。目前已证实AKF-PD对肾纤维化实验动物模型有良好的抗纤维化疗效。但AKF-PD治疗肾间质纤维化的具体机制尚未完全阐明。目前的研究结果显示AKF-PD(?)(?)抑制(?)NADPH氧化酶的表达和减少活性氧的产生,抑制肾小管细胞凋亡、转分化及成纤维细胞的增殖,下调致纤维化细胞因子的表达,减少病变肾脏基质胶原合成。研究表明炎症反应是肾脏纤维化发病进程中的早期事件,对肾纤维化的发病具有重要作用。但AKF-PD对肾脏局部细胞炎症反应的影响及其作用机制尚不清楚。肾纤维化是个复杂的病理生理过程,需要多种细胞的参与及相互作用,包括肾固有细胞及募集的炎症细胞。肾脏受到多种致肾损伤因子作用后,一方面非致死受损的肾固有细胞本身发生活化、增殖,分泌大量炎症/趋化因子,加重肾损伤;另一方面致死性受损的肾固有细胞发生坏死、凋亡,细胞死亡后作为抗原激活临近炎症细胞,促进炎性细胞分泌炎症因子/趋化因子,扩大炎症反应,进一步加重肾损伤。
和 肾小管上皮细胞是兼有免疫调节作用且生物学功能十分活跃的细胞。作为肾固有细胞的主要组成部分,其在肾脏疾病局部微环境形成及调控中发挥重要作用。研究报道促炎因子TNF-a在肾间质纤维化中表达增加,增加的TNF-a可以加重炎症反应及肾损伤。 目的:观察AKF-PD对促炎因子TNF-a诱导HK-2细胞炎症因子及趋化因子表达的影响;进一步探讨AKF-PD对TNF-a诱导HK-2细胞MAPK及NF-κB信号通路的调节作用。 www.selleckchem.cn/products/MLN-2238.html 方法:将细胞分为空白对照组,TNF-α刺激组,TNF-a+AKF-PD组,TNF-a+DEX组,分别用2mM AKF-PD、1μMDEX预处理HK-2细胞1小时后,加入TNF-a (lOng/ml)继续培养24小时,收细胞上清,用ELISA方法观察AKF-PD对TNF-α刺激的HK-2细胞IL-6、IL-8及MCP-1的影响。 将细胞分为空白对照组,TNF-a刺激组,TNF-a+AKF-PD组,TNF-a+MAPKs抑制剂组,分别用2mM AKF-PD预处理HK-2细胞24小时,10pM MAPKs特异性抑制剂(PD98058、SB203580、SP600125)处理HK-2细胞1小时后,加入10ng/ml TNF-a继续培养15分钟,提细胞蛋白,用Western Blot方法检测AKF-PD对p-ERK1/2,p-p38和p-JNK表达的影响。 将细胞分为空白对照组,TNF-α刺激组,TNF-a+AKF-PD组,TNF-a+NF-κB抑制剂组,分别用2mM AKF-P D预处理HK-2细胞24小时,10μM NF-κB特异性抑制剂BAY11-7082处理HK-2细胞1小时后,加入10ng/ml TNF-α继续培养60分钟,提细胞蛋白,用WesternBlot方法检测AKF-PD对细胞内p-IκBα表达的影响。 将细胞分为空白对照组,TNF-α刺激组,TNF-α+AKF-PD组,用2mM AKF-PD预处理HK-2细胞24小时后,加入10ng/ml TNF-α继续培养60分钟,提取细胞核蛋白,用Western Blot方法检测AKF-PD对细胞核内P65表达的影响。 将细胞分为空白对照组,TNF-α刺激组,TNF-α+AKF-PD组,TNF-α+DEX组,分别用2mM AKF-PD、1μM DEX预处理HK-2细胞24小时后,加入TNF-α (lOng/ml)继续培养60分钟,采用双荧光素酶报告分析系统检测AKF-PD对TNF-α刺激的HK-2细胞NF-κB报告基因转录活性的影响。 结果:TNF-α刺激HK-2细胞24小时后,细胞上清中IL-6、IL-8及MCP-1的分泌量明显高于正常组(p<0.05);TNF-α刺激HK-2细胞15分钟后,p-p38的表达显著上升,AKF-PD和p-p38特异性抑制剂SB203580均能有效降低p38的磷酸化(p<0.